BMV.1 - Estrazione DNA da materiale vegetale
BMV.2 - Estrazione RNA vegetale
BMV.3 - Analisi espressione genica in real time (minimo 25 campioni)
BMV.4 - Sequenziamento singolo gene per analisi filogenetica
BMV.5 - Genotipizzazione molecolare tramite SNP
BMV.6 - Analisi bioinformatica SNP (struttura di popolazione)
BMV.7 - Analisi bioinformatica SNP (filogenetica)
BMV.8 - Elaborazione risultati e generazione report
BMV.9 - Genotipizzazione molecolare mediante marcatori molecolari (DNA barcoding – 1 marcatore)
BMV.10 - Genotipizzazione molecolare mediante marcatori molecolari (DNA barcoding – 3 marcatori)
BMV.11 - Identificazione genetica di matrici alimentari (livello specie) (DNA barcoding – 1 marcatore)
BMV.12 - Identificazione genetica di matrici alimentari (livello specie) (DNA barcoding – 3 marcatori)
Referenti
-Prof. Massimo Labra: massimo.labra@unimib.it
-Prof. Fabrizio Grassi: fabrizio.grassi@unimib.it
-Prof. Maurizio Casiraghi: maurizio.casiraghi@unimib.it
COMET.1 - Service of protocol set-up for production and characterization of homotypic spheroids or characterization of existing models of homotypic spheroids from immortalized cell lines
COMET.1.1 - Set-up of protocol for the production of spheroid culture (1 cell line - 20 hours of work expected)
COMET.1.2 - Morphometric characterization using confocal microscopy of spheroids in standard condition or after specific treatment - Operetta CLS (1 cell line - 5 hours of work expected)
COMET.1.3 - Quantitative data analysis on confocal imaging results - processing of images, quantitative data extraction and analysis (1 cell line - 2 hours of work expected)
COMET.2 - Service of protocol set-up for production and characterization of heterotypic spheroids or characterization of existing models of heterotypic spheroids from immortalized cell lines and different stromal populations
COMET.2.1 - Set-up of protocol for the production of spheroid culture (30 hours of work expected)
COMET.2.2 - Morphometric characterization using confocal microscopy of spheroids in standard condition or after specific treatment - Operetta CLS (10 hours of work expected)
COMET.2.3 - Quantitative data analysis on confocal imaging results - processing of images, quantitative data extraction and analysis (3 hours of work expected)
COMET.3 - Sample preparation for omics analysis including: set up of the experiment - sample preparation and data collection under basal condition and\or nutritionally or pharmacologically perturbed conditions (biological duplicate with at least 3 technical replicate) - Data normalization per cell through imaging - data processing
COMET.3.1 - Sample preparation for omics analysis of monolayer culture (2D) (16 hours of work expected)
COMET.3.2 - Data normalization per cell through imaging - data processing (2D) (2 hours of work expected)
COMET.3.3 - Sample preparation for omics analysis of homotypic spheroid culture (3D) (16 hours of work expected)
COMET.3.4 - Data normalization per cell through imaging - data processing (3D) (1 hour of work expected)
COMET.3.5 - Sample preparation for omics analysis of heterotypic spheroid culture (3D) (16 hours of work expected)
COMET.3.6 - Data normalization per cell through imaging - data processing (3D) (1 hour of work expected)
COMET.4 - Study of functional metabolism by Seahorse Technology Analysis - XFe96
COMET.4.1 - Study of functional mitochondrial metabolism with "Mitostress test Kit" on monolayer culture (2D) for each plate (3 hours of work expected)
COMET.4.2 - Study of functional mitochondrial metabolism with "Mitostress test Kit" on spheroid culture (3D) for each plate (4 hours of work expected)
COMET.4.3 - Study of functional glycolytic metabolism on monolayer culture (2D) for each plate (3 hours of work expected)
COMET.4.4 - Study of functional glycolytic metabolism on spheroid culture (3D) (4 hours of work expected)
COMET.4.5 - Study of functional metabolism on non-adherent cell populations with "T-cell metabolic profiling kit" (4 hours of work expected)
COMET.4.6 - Quantitative imaging analysis associated to seahorse analysis for cell number normalization on monolayer culture (2D) and non-adherent cell populations - Operetta CLS (1.5 hours of work expected)
COMET.4.7 - Quantitative imaging analysis associated to seahorse analysis for cell number normalization on spheroid culture (3D) - Operetta CLS (1.5 hours of work expected)
COMET.4.8 - Data processing and analysis of seahorse results for description of metabolic profile (4 hours of work expected)
COMET.5 - High content Imaging analysis using confocal microscopy (recommended for 2D cellular models)
COMET.5.1 - Study of mitochondrial metabolism with cationic dyes (4 hours of work expected)
COMET.5.2 - Evaluation using dyes of cell redox status (mitochondrial and cellular ROS) (6 hours of work expected)
COMET.5.3 - Characterization of fatty acid metabolism (oxidation and distribution) using specific dyes (8 hours of work expected)
COMET.5.4 - Imaging data processing and analysis (4 hours of work expected)
Responsabili:
Prof. Marco Vanoni
tel: +39 02 6448 3525/3384/3534
email: marco.vanoni@unimib.it
Dr.ssa. Elena Sacco
tel: +39 02 6448 3379/3385
email: elena.sacco@unimib.it
Referente: Dr.ssa Valentina Pasquale
tel: +39 02 6448 3385/4123
email: valentina.pasquale@unimib.it,
FOOD.1 - Sviluppo medoto di estrazione Green di sostanze bioattive e piccole molecole da matrici naturali, nutraceutiche, alimentari
FOOD.2 - Determinazione dei fenoli totali per via spettrofotometrica (metodo folin ciocalteu)
FOOD.3 - Determinazione attività antiossidante spettrofotometrica (metodo DPPH/ABTS/ORAC)
FOOD.4 - Determinazione attività ipoglicemizzante per via spettrofotometrica enzimatica (alfa amilasi/glucosidasi)
FOOD.5 - Determinazione attività ipolipemizzanti per via spettrofotometrica enzimatica (lipasi)
FOOD.6 - Liofilizzazione di soluzioni o estratti di origine naturale, nutraceutiche ed alimentari
FOOD.7 - Interpretazione dati Spettrometria di massa ad alta risoluzione
FOOD.8 - Analisi quali/quantitativa mediante HPLC spettrometria di massa
FOOD.9 - Analisi quali/quantitativa mediante spettrometria di massa
FOOD.10 - Analisi quali/quantitativa mediante HPLC UV
FOOD.11 - Analisi quali/quantitativa mediante HPLC UV
FOOD.12 - Analisi quali/quantitativa mediante GC FID
FOOD.13 - Analisi quali/quantitativa mediante GC FID
FOOD.14 - Analisi quali/quantitativa mediante GC MS
FOOD.15 - Analisi quali/quantitativa mediante GC MS
Responsabile: Prof. Luca Campone
tel: +39 02 6448 3330
email: luca.campone@unimib.it
CHIMBO.1 - Sintesi custom di molecole organiche bioattive, intermedi sintetici e/o materiali funzionalizzati (su scala mg-g)
CHIMBO.2 - Verifica di procedimenti per sintesi di intermedi organici
CHIMBO.3 - Purificazione tramite cromatografia liquida preparativa di composti organici (fase diretta o fase inversa)
CHIMBO.4 - Messa a punto delle condizioni cromatografiche per separazione di composti organici (analisi HPLC)
CHIMBO.5 - Analisi in cromatografia Liquida (HPLC) di composti organici con Detector UV-Vis
CHIMBO.6 - Analisi in cromatografia Liquida (HPLC) di composti organici con Detector MS Ion trap
CHIMBO.7 - Analisi in spettrometria di massa a bassa risoluzione (MS Ion Trap) - infusione diretta
CHIMBO.8 - Analisi in spettrometria di massa a bassa risoluzione con frammentazione (MS/MS o MSn Ion Trap)* - infusione diretta
CHIMBO.9 - Liofilizzazione di composti organici o campioni di interesse biologico e/o farmaceutico (proteine, peptidi ed anticorpi)
CHIMBO.10 - Interpretazione di dati di caratterizzazione strutturale di composti organici (previa acquisizione dei dati analitici NMR, MS, etc)
CHIMBO.11 - Ricerca bibliografica su tematiche attinenti alla chimica organica, bioorganica e farmaceutica (oraria)
CHIMBO.12 - Consulenza o Perizia tecnica su problematiche attinenti alla chimica organica, bioorganica e farmaceutica (oraria)
CHIMBO.13 - Analisi conformazionale di molecole organiche e localizzazione degli stati di transizione delle reazioni organiche
Responsabili:
Prof. Francesco Peri
tel: +39 02 6448 3453
email: francesco.peri@unimib.it
Prof.ssa Laura Cipolla
tel: +39 02 6448 3460
email: laura.cipolla@unimib.it
Prof.ssa Cristina Airoldi
tel: +39 02 6448 3303
email: cristina.airoldi@unimib.it
Dr. Alessandro Palmioli
tel: +39 02 6448 3309/3422
email: alessandro.palmioli@unimib.it
Dr.ssa Laura Legnani
tel: +39 02 6448 3420
email: laura.legnani@unimib.it
EIP.1 - Protein production in Escherichia coli BL21 cells: set up of production conditions and SDS-PAGE analysis.
EIP.2 - Cell harvesting and cell pellet resuspension in suitable buffer
EIP.3 - Cell disruption, including washing steps - bacterial cells
EIP.4 - Cell disruption, including washing steps - yeast cells
EIP.5 - Cell disruption, including washing steps - nonconventional microorganisms
EIP.6 - Cell extract clarification
EIP.7 - Protein purification by metal ion affinity chromatography and Buffer exchange in suitable buffer
Responsabile: Prof.ssa Stefania Brocca
stefania.brocca@unimib.it
FAR.1 - "Determinazione attività antinfiammatoria e analgesica nei seguenti modelli:
- Infiammazione acuta da carragenina nel ratto e nel topo
- Infiammazione cronica da adiuvante di Freund nel ratto
- Neuropatia da costrizione cronica del nervo sciatico nel ratto e nel topo"
FAR.2 - Misure di binding recettoriale
FAR.3 - ELISA test per la determinazione di: citochine, ormoni, fattori di trascrizione
FAR.4 - Valutazione della citotossicità di composti in cellule e tessuti tramite dosaggio del GSH e GSSG e funzionalità degli enzimi antiossidanti
Responsabile: Prof.ssa Barbara Costa
tel: +39 02 6448 3436
email: barbara.costa@unimib.it
FCC.1 - Analisi elettrofisiologiche (patch clamp) in CARDIOmiociti isolati da piccoli animali
FCC.2 - Analisi della dinamica del calcio (sodio) intracellulare in CARDIOmiociti isolati da piccoli animali tramite fotometria o microscopia confocale
FCC.3 - Analisi elettrofisiologiche (patch clamp o MEA) in CARDIOmiociti derivati da cellule staminali (iPSC)
FCC.4 - Analisi della dinamica del calcio (sodio) intracellulare in CARDIOmiociti derivati da cellule staminali (iPSC) tramite fotometria e microscopia confocale
FCC.6 - Analisi elettrofisiologiche (patch clamp) in cellule (i.e. HEK293) esprimenti proteine d'interesse (i.e. canali ionici)
FCC.7 - Analisi della dinamica del calcio (sodio) intracellulare in cellule MUSCOLARI LISCE vascolari (isolate da arteria polmonare di piccoli animali) tramite fotometria o microscopia confocale
FCC.8 - Analisi molecolari (western blot o qRT-PCR o immunofluorescenza) nei diversi sistemi cellulari
FCC.9 - Misure elettrofisiologiche di singole cellule (HEK293, CARDIOmiociti) accoppiate a fotostimolazione, per analizzare con precisione l’attività dei canali ionici o il potenziale di membrana cellulare in risposta a stimoli luminosi.
Referenti:
Prof.ssa Marcella Rocchetti
tel: +39 02 6448 3377
email: marcella.rocchetti@unimib.it
Prof. Francesco Lodola
email: francesco.lodola@unimib.it
tel: +39 02 6448 3228
FORFA.1 - Analisi granulometrica polveri. Metodo setacciatura
FORFA.2 - Analisi densità apparente polveri. (Metodo Tap density test)
FORFA.3 - Saggio Friabilità compresse*
FORFA.4 - Saggio Crushing Test*
FORFA.5 - Saggio di Disaggregazione per forme di dosaggio solide*
FORFA.6 - Saggio di Dissoluzione per forme di dosaggio solide*
FORFA.7 - Analisi quantitativa per spettrofotometria UV. Retta di taratura con standard
FORFA.8 - Analisi reologica di campioni semisolidi (Reometro)
FORFA.9 - Analisi reologica di campioni semisolidi (Viscosimetro)
FORFA.10 - Analisi di struttura di materiali (Texture analyzer)
FORFA.11 - Prove di fattibilità di un processo di compressione
FORFA.12 - Prove di fattibilità di un processo di rivestimento in bassina
FORFA.13 - Prove di fattibilità di un processo per Stampa 3D (Binder Jetting)
FORFA.14 - Elaborazione dati e generazione report
*Saggi secondo Farmacopea Europea
Referenti:
Prof. Miriam Colombo
tel.: +39 02 6448 3388
miriam.colombo@unimib.it
Dr. Evelyn Ochoa
tel: +39 02 6448 8065/8403/3383
evelyn.ochoa@unimib.it
MIC.1 - Microscopia confocale (Nikon A1R) assistita da tecnico specializzato: OSSERVAZIONE E ACQUISIZIONE
MIC.2 - Microscopia confocale (Nikon A1R) assistita da tecnico specializzato: ANALISI E/O INTERPRETAZIONE DATI
Referenti:
Prof.ssa Marcella Rocchetti: marcella.rocchetti@unimib.it
Dr.ssa Anna M. Villa: annamaria.villa@unimib.it
MIB.1 - Controllo microbiologico di materiale di confezionamento primario
MIB.2 - Analisi microbiologica dell'acqua
MIB.3 - Analisi microbiologica di emulsioni e prodotti non filtrabili
MIB.4 - Analisi microbiologica di prodotti filtrabili
MIB.5 - Challenge Test
MIB.6 - Convalida di metodi analitici microbiologici
MIB.7 - Identificazione di ceppi batterici
MIB.8 - Valutazione proprietà antibatterica di tessuti o superfici polimeriche
MIB.9 - Determinazione attività antibatterica di campioni trattati con sostanze antibatteriche
MIB.10 - Valutazione proprietà antibatterica di tessuti, superfici polimeriche, superfici ceramiche
Responsabile: Ric. Patrizia Di Gennaro
tel: +39 02 6448 2949
email: patrizia.digennaro@unimib.it
MIO.1 - Microscopia ottica e a fluorescenza per lo studio di sistemi cellulari e materiali
Responsabile: Ric. Renata Tisi
tel: +39 02 6448 3522
email: renata.tisi@unimib.it
MOM.1 - Predizione di strutture tridimensionali di proteine mediante homology modelling
MOM.2 - Docking Molecolare (HTS)
Responsabile: Dr. Jacopo Vertemara
tel: +39 02 6448 3473
email: jacopo.vertemara@unimib.it
NFC.1 - Misure di potenziale, corrente (tecnica del patch-clamp) e contrattilità (tecnica video) in miociti isolati dal cuore di cavia o ratto
Responsabile: Prof. Antonio Zaza
tel: +39 02 6448 3307
email: antonio.zaza@unimib.it
NFI.1 - Validità linee cellulari tipo A
NFI.2 - Validità linee cellulari tipo B
NFI.3 - Validità linee cellulari tipo C
NFI.4 - Validità linee cellulari tipo D
NFI.5 - Validità linee cellulari tipo E
NFI.6 - Studi funzionali singola cellula
NFI.7 - Studi funzionali rete neuroni corticali
Responsabile: Prof. Andrea Becchetti
tel: +39 02 6448 3301
email: andrea.becchetti@unimib.it
ZOO.1 - Estrazione DNA da materiale animale
ZOO.2 - Genotipizzazione molecolare mediante marcatori molecolari (DNA barcoding, SNP)
ZOO.3 - Identificazione morfologica di insetti
ZOO.4 - Acquisizione immagini stacking di animali o insetti
ZOO.5 - Estrazione di DNA da campioni eterogenei per composizione tassonomica (min 24 camp.)
ZOO.6 - Quantificazione del DNA tramite tecniche fluorimetriche (Qubit) (min 24 camp.)
ZOO.7 - Quantificazione DNA target (batteri, geni di antimicrobial resisistance, altri) tramite qPCR con primer noti (min 24 camp.)
ZOO.8 - Quantificazione assoluta DNA target (batteri, geni di antimicrobial resisistance, altri) tramite digital qPCR con primer noti (min 24 camp.)
ZOO.9 - Preparazione librerie per 16S rRNA sequencing (min 24 camp.)
ZOO.10 - Analisi sequenze 16S per studi sul microbioma (ASVs, taxonomy, alpha e beta-diversity) (min 20 camp., min ore di lavoro 30)
ZOO.11 - Analisi sequenze shotgun per studi sul microbioma (annotazione e abbondanza) (min 20 camp., min ore di lavoro 40)
ZOO.12 - Assistenza nel design sperimentale e nella messa a punto di studi sul microbioma
Referenti:
Prof Andrea Galimberti: andrea.galimberti@unimib.it
Dr. Paolo Biella: paolo.biella@unimib.it
Dr. Antonia Bruno: antonia.bruno@unimib.it
Attrezzato per lo studio di modelli sperimentali prodotti in casa o ottenuti da centri di biobanking specializzati. I modelli includeranno colture miste, colture 3D sviluppate con biostampa 3D o integrate con sistemi di microfluidica che permettono di analizzare in condizioni controllate (in termini ambientali, genetici ed epigenetici) i meccanismi cellulari e molecolari alla base di eventi chiave nello sviluppo delle patologie, quali ad esempio la progressione metastatica.
Strumenti a disposizione:
- FacsMelody – Cell Sorter.Separazione e analisi di popolazioni cellulari, studio dell'espressione proteica, Immuno Typing, diagnostica clinica, ciclo cellulare.
- Operetta CLS – Microscopio confocale per micropiastre. High-Content Analysis (HCA), saggi su cellule vive, studio di modelli cellulari complessi, phenotypic fingerprinting.
- Seahorse XFe96 – Analizzatore metabolico cellulare. Metabolismo energetico in tempo reale, tossicologia, malattie degenerative, infiammazione, oncologia.
- X-CLARITY – Chiarificatore di tessuti, sezioni di tessuto, interi organi. Imaging, analisi dello sviluppo embrionale. organoidi, sferoidi, neuroscienze.
- Thunder Imager Live Cell – Microscopio ad ampio campo. Acquisizione e analisi di immagini in fluorescenza, in campo chiaro e in contrasto di fase.
LID1.1a - OPERETTA Imaging assay (3-4 hours, depending on samples and assay)
LID1.1b - OPERETTA Data analysis
LID1.2a - SEAHORSE assay (3-4 hours, depending on samples and assay)
LID1.2b - SEAHORSE Data analisys
LID1.3 - CELL SORTER
Referenti:
Dr.ssa Valentina Pasquale , valentina.pasquale@unimib.it , tel 02 6448 3385/4123 ( Operetta CLS )
Dr. Stefano Busti , stefano.busti1@unimib.it , tel 02 6448 3385/4123 ( Thunder Imager Live Cell , Seahorse XFe96 )
Dr. Matteo Urbano matteo.urbano@unimib.it , tel 02 6448 3345 ( X-CLARITY )
Dr.ssa Stefania Citterio stefania.citterio@unimib.it , tel 02 6448 3341 ( FacsMelody, Thunder Imager Live Cell)
Il laboratorio è finalizzato alla caratterizzazione e separazione delle componenti presenti in miscele complesse di diverse origini, quali ad esempio quelle alimenti o estratti cellulari, utilizzando tecniche separative cromatografiche accoppiate a spettrometri di massa in alta e bassa risoluzione e spettrofotometri in UV/VIS.
Strumenti a disposizione:
- HPLC preparativa: Cromatografia su scala preparativa e analitica, per purificazione di matrici complesse basata su dati di spettrometria di massa.
- NGC: Sistema di analisi cromatografica a media pressione, per isolare, purificare e analizzare su scala preparativa e analitica diversi tipi di molecole tra cui proteine.
- Xevo G2-XS Qtof: Spettrometro di massa accoppiato a due moduli cromatografici, per quantificazione accurata e precisa dei componenti di interesse ai livelli più bassi possibili in presenza di matrici complesse.
LID2.1 - Medium pressure chromatography system (NGC - Biorad)
LID2.2 - Sviluppo metodi di purificazione con Medium pressure chromatography system (NGC - Biorad)
LID2.3 - HPLC (Autopurification system - MS and UV directed - Waters)
LID2.4 - Sviluppo metodo di purificazion mediante HPLC (Autopurification system - MS and UV directed - Waters)
LID2.5 - High resolution mass spectrometer (Xevo G2-XS accoppiato con UPLC H-Class and GC 7890)
LID2.6 - Analisi metaboliti mediante infusione diretta con Xevo G2-XS QTOF
LID2.7 - Analisi metabolomica "untargeted" mediante GC-MS con Xevo G2-XS QTOF, #1 sample, #1 access
LID2.8 - Analisi metabolomica "targeted" mediante GC-MS con Xevo G2-XS QTOF, #1 sample, #1 access
LID2.9 - Analisi metabolomica "untargeted" mediante LC-MS con Xevo G2-XS QTOF, #1 sample, #1 access
LID2.10 - Analisi metabolomica "targeted" mediante LC-MS con Xevo G2-XS QTOF, #1 sample, #1 access
LID2.11 - Analisi profili metabolici mediante LC o GC-MS con Xevo G2-XS QTOF incluso sviluppo metodo, disegno sperimentale , analisi di un batch di campioni (fino a 20 campioni), elaborazione del dato e preparazione di un report, #1batch, #1 access
LID2.12 - Caratterizzazione di proteine mediante LC-MS con Xevo G2-XS QTOF partendo da campioni digeriti, #1 sample, #1 access
LID2.13 - Caratterizzazione di proteine mediante LC-MS con Xevo G2-XS QTOF inclusa digestione proteica, #1 sample, #1 access
LID2.14 - Identificazione di proteine in miscela complessa mediante LC-MS con Xevo G2-XS QTOF inclusa digestione proteica e generazione report, #1 sample, #1 access
LID2.15 - Analisi proteomica "targeted" mediante LC-MS con Xevo G2-XS QTOF, #1 sample, #1 access
LID2.16 - Sviluppo metodo per analisi proteomica "targeted" mediante LC-MS con Xevo G2-XS QTOF, #1 batch, #1 access
LID2.17 - Analisi proteine intatte mediante infusione diretta con Xevo G2-XS QTOF
LID2.18 - Preparazione campioni per spettrometria di massa, #1 sample, #1 access
LID2.19 - Elaborazione dati e generazione report
LID2.20 - Consulenza tecnica per sviluppo metodo ed iimpostazione disegno sperimentale per analisi in spettrometria di massa
Per informazioni: Dott.ssa Maura Brioschi, maura.brioschi@unimib.it, telefono 02-6448 3411 / 3324
Oltre alla interazione tra singole molecole, anche in miscele complesse, come quelle di metaboliti e macromolecole biologiche ottenute per via estrattiva da fonti naturali, il nuovo LID consentirà lo studio di interazioni molecolari su nanostrutture, tra cui gli aggregati macromolecolari (ad esempio aggregati amilidogenici), e su cellule intere.
Strumenti a disposizione:
- BiacoreX100 : Biosensore a Risonanza Plasmonica di Superficie (SPR, surface plasmon resonance).
- ITC : Microcalorimetro isotermico, MicroCal PEAQ-ITC.
LID3.1 - BIACOREX100
LID3.2 - BIACOREX100_Immobilizzazione
LID3.3 - BIACOREX100_analisi di interazione
LID3.4 - BIACOREX100_Elaborazione dati e generazione report
LID3.5 - ITC
Per informazioni: Dr.ssa Annalisa D’Urzo, +39 02 6448 3397, annalisa.durzo@unimib.it
SPC.1 - Analisi qualitativa mediante spettroscopia UV-VIS/NIR: determinazione dello spettro nella regione 190- 2700 nm.
SPC.2 - Analisi quantitativa mediante spettroscopia UV-VIS: retta di taratura con standard e determinazione della concentrazione dell'analita
SPC.3 - Analisi enzimatiche mediante spettroscopia UV-VIS: Determinazione dei parametri cinetici di un enzima (KM e Vmax), determinazione delle condizioni ottimali di catalisi di un enzima (optimum di pH e di Temperatura). (costo del substrato escluso)
Responsabile: Prof.ssa Stefania Brocca
tel: +39 02 6448 3518
email: stefania.brocca@unimib.it